โดยทั่วไป เนื่องจากองค์ประกอบที่ซับซ้อนของเลือด สารหลายชนิด โดยเฉพาะอย่างยิ่งพลาสมาหรือซีรั่มของสัตว์ชั้นสูง มีผลรบกวนอย่างมากต่อปฏิกิริยาระหว่างรีเอเจนต์ TAL (LAL) และเอนโดท็อกซิน ดังนั้น เมื่อเราทดสอบเอนโดทอกซินของตัวอย่างดังกล่าว เราจะต้องกำจัดสารรบกวนออกก่อนทำการทดสอบ

ในปัจจุบัน สารรบกวนในพลาสมาส่วนใหญ่ประกอบด้วยสารยับยั้งเอนไซม์โปรตีเอส โปรตีนที่จับเอนโดทอกซิน และสารยับยั้งพลาสมิโนเจน สำหรับการวัดสี ปัจจัย Xa สามารถย่อยสลายสายเปปไทด์ Boc-LEU-Gly-Arg-PNA ดังนั้นจึงจำเป็นต้องกำจัดสารรบกวนเหล่านี้ก่อนกำหนด

วิธีการปรับสภาพเพื่อกำจัดสารรบกวนในเลือดมีดังนี้:

(1) วิธีการให้ความร้อนแบบเจือจาง: พลาสมาจะเจือจาง 3~10 เท่าด้วยน้ำที่ละลายแล้ว จากนั้นให้ความร้อนในน้ำ 37~100 ℃ เวลาถือครองโดยทั่วไปคือ 5 ~ 10 นาที

(2) วิธีการสกัดด้วยคลอโรฟอร์ม: เติมคลอโรฟอร์มในปริมาณที่เท่ากันลงในพลาสมาและสั่นสะเทือนเป็นเวลา 3 ชั่วโมง จากนั้นนำชั้นบนไปตรวจหา

(3) วิธีการบำบัดด้วยอีเธอร์: เพิ่มอีเธอร์ในพลาสมาเพื่อการรักษาและกำจัดอีเทอร์ที่ 40 ℃;

(4) วิธี Trifluoroacetic acid: เติมกรดอะซิติกลงในพลาสมาเพื่อปรับ pH 4.0 จากนั้นใช้ K2HPO4 เพื่อปรับ pH เป็น 7~7.5

(5) วิธีการบำบัดสารลดแรงตึงผิว: เช่นเดียวกับวิธีการให้ความร้อนแบบเจือจาง เฉพาะน้ำเจือจางเท่านั้นที่เปลี่ยนเป็นสารลดแรงตึงผิว

(6) การกรองเจล

(7) วิธีการบำบัดด้วยด่าง: พลาสมาถูกเก็บไว้ที่ 0.2NNaOH 37 ℃ เป็นเวลา 10 นาที จากนั้นทำให้เป็นกลางด้วย HCl;

(8) วิธีกรดเปอร์คลอริก (PCA) หรือวิธีกรดเปอร์คลอริกใหม่ (PCA ใหม่);

(9) วิธีบีด: ใส่เรซินพิเศษที่ดูดซับเอนโดท็อกซินลงในพลาสมา นำออกมา แล้วเติมน้ำยา LAL เพื่อทำปฏิกิริยา

ในบรรดาวิธีการเหล่านี้ วิธีการที่ใช้โดยทั่วไป ได้แก่ วิธีการสกัดคลอโรฟอร์ม วิธีการให้ความร้อนแบบเจือจาง วิธีกรดเปอร์คลอริก (PCA) และวิธีกรดเปอร์คลอริกใหม่ (PCA ใหม่) สองวิธีแรกจำเป็นต้องได้รับการพิจารณาในระหว่างการพิจารณา เนื่องจากการมีอยู่ของอัตราการฟื้นตัวของเอนโดท็อกซิน ผลบวกลวง และปัญหาอื่นๆ วิธี PCA (วิธี PCA ใหม่) เนื่องจากอัตราการฟื้นตัวที่ดีของเอนโดทอกซินที่เพิ่มเข้ามา ปัจจุบันใช้เป็นหลักในการรักษาพรีคลินิกในญี่ปุ่น